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CONTACTS
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PLATEFORME ORGANOÏDES CORE FACILITY ORGANOÏDS |
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Mini CVFormation : Licence Biologie cellulaire et physiologie (Université de Limoges)
Master Biotechnologies, Génomique et Biothérapie (Université de Limoges) Expérience : 2015-2016 : Stage de M1 à Limoges au LCSN sur le stress et les porphyrines anioniques. 2016-2017 : Stage de M2 à Toulouse à l’IRSD sur l’Hybridation In Situ. 2017 : Ingénieur d’études en CDD au sein de l’équipe 1 de l’IRSD Formation : Cell biology and physiology license (Limoges University) Master of Biotechnologies, Genomic and Biotherapies (Limoges University) Experience : 2015-2016 : M1 internship in Limoges in LCSN on stress and anionic porphyrins. 2016-2017 : M2 internship in Toulouse in IRSD on In Situ hybridization. 2017 : Engineer, contractual position |
EXPERTISELignée cellulaire Caco-2 (cellules humaines épithéliales colorectales cancéreuses) et résections de patients contrôles ou atteints de MICI
Techniques utilisées : IF, organoïdes, transwell, clonage Cell line Caco-2 and resections of control and MICI patients Technical approaches : IF, organoïds, transwell, cloning |
Recherche
Développement et analyse de primocultures d’organoïdes 3D.
La mise en place de modèles d’organoïdes 3D à partir de tissus murins et humains a été une avancée majeure durant la dernière décennie. Ces modèles sont basés sur les capacités des cellules souches d’un tissu à renouveller les diverses populations cellulaires le constituant.
Les cellules souches ont besoin d’une niche microenvironnementale unique. Ainsi, une fois en présence d’une combinaison spécifiques de facteurs et incorporées dans une matrice 3D reconstituant cette niche, les tissus épitheliaux murins et humains peuvent former des organoïdes. Ceci a été décrit pour différents organes, comme l’estomac, l’intestin grêle, le colon, le pancréas, le foie et la vessie, (Barker et al., 2010; Boj et al., 2015; Huch et al., 2013; Sato et al., 2011; Varley CL et al., 2011).
Ces modèles d’organoïdes 3D représentent un grand interêt à la fois pour la recherche fondammentale et translationnelle.
Ce type de culture de mini-organe peut être appliquée à des tissus sains ou pathologiques ( inflammation et cancer ). Pendant la tumorigènese, par exemple, les facteurs de niche deviennent souvent inutiles conduisant à des conditions de culture moins stringentes pour les organoïdes tumoraux par rapport à des organoïdes «normaux». Les organoïdes cancéreux établis peuvent être xenotransplantés afin de récapituler l’histopathologie de la tumeur parentale dont ils sont derivés. Il a été montré que les organoïdes cancéreux reflètent les lésions génétiques et les profils d’expression génique, ouvrant la possibilité de tester des médicaments afin de prédire les réponses des patients à des traitements cliniques.
Ainsi, établir une biobanque d’organoïdes dérivés de tissus sains/normaux et pathologiques pourra aider à appréhender la pathogénèse et développer de nouveaux outils de diagnostic et thérapeutiques. Notre institut met actuellement en place ce genre de banque à partir des tissus coliques sains, et de tissus issus de patients atteints de maladies inflammatoires chroniques de l’intestin et de cancers.
La mise en place de modèles d’organoïdes 3D à partir de tissus murins et humains a été une avancée majeure durant la dernière décennie. Ces modèles sont basés sur les capacités des cellules souches d’un tissu à renouveller les diverses populations cellulaires le constituant.
Les cellules souches ont besoin d’une niche microenvironnementale unique. Ainsi, une fois en présence d’une combinaison spécifiques de facteurs et incorporées dans une matrice 3D reconstituant cette niche, les tissus épitheliaux murins et humains peuvent former des organoïdes. Ceci a été décrit pour différents organes, comme l’estomac, l’intestin grêle, le colon, le pancréas, le foie et la vessie, (Barker et al., 2010; Boj et al., 2015; Huch et al., 2013; Sato et al., 2011; Varley CL et al., 2011).
Ces modèles d’organoïdes 3D représentent un grand interêt à la fois pour la recherche fondammentale et translationnelle.
Ce type de culture de mini-organe peut être appliquée à des tissus sains ou pathologiques ( inflammation et cancer ). Pendant la tumorigènese, par exemple, les facteurs de niche deviennent souvent inutiles conduisant à des conditions de culture moins stringentes pour les organoïdes tumoraux par rapport à des organoïdes «normaux». Les organoïdes cancéreux établis peuvent être xenotransplantés afin de récapituler l’histopathologie de la tumeur parentale dont ils sont derivés. Il a été montré que les organoïdes cancéreux reflètent les lésions génétiques et les profils d’expression génique, ouvrant la possibilité de tester des médicaments afin de prédire les réponses des patients à des traitements cliniques.
Ainsi, établir une biobanque d’organoïdes dérivés de tissus sains/normaux et pathologiques pourra aider à appréhender la pathogénèse et développer de nouveaux outils de diagnostic et thérapeutiques. Notre institut met actuellement en place ce genre de banque à partir des tissus coliques sains, et de tissus issus de patients atteints de maladies inflammatoires chroniques de l’intestin et de cancers.
Production scientifique scientific production
1. PMID: 37329676
Daphnanes diterpenes from the latex of Hura crepitans L. and their PKCζ-dependent anti-proliferative activity on colorectal cancer cells.
Crossay E, Jullian V, Trinel M, Sagnat D, Hamel D, Groppi E, Rolland C, Stigliani JL, Mejia K, Cabanillas BJ, Alric L, Buscail E, El Kalamouni C, Mavingui P, Deraison C, Racaud-Sultan C, Fabre N.Bioorg Med Chem. 2023 Jul 15;90:117366. doi: 10.1016/j.bmc.2023.117366. Epub 2023 Jun 7.PMID: 37329676
2. PMID: 36283083
Prenatal stress induces changes in PAR2- and M3-dependent regulation of colon primitive cells.
Berger M, Guiraud L, Dumas A, Sagnat D, Payros G, Rolland C, Vergnolle N, Deraison C, Cenac N, Racaud-Sultan C.Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2022 Dec 1;323(6):G609-G626. doi: 10.1152/ajpgi.00061.2022. Epub 2022 Oct 25.PMID: 36283083 Free PMC article.
3. PMID: 33674762
Epithelial production of elastase is increased in inflammatory bowel disease and causes mucosal inflammation.
Motta JP, Rolland C, Edir A, Florence AC, Sagnat D, Bonnart C, Rousset P, Guiraud L, Quaranta-Nicaise M, Mas E, Bonnet D, Verdu EF, McKay DM, Buscail E, Alric L, Vergnolle N, Deraison C.Mucosal Immunol. 2021 May;14(3):667-678. doi: 10.1038/s41385-021-00375-w. Epub 2021 Mar 5.PMID: 33674762 Free PMC article.
4. PMID: 33201214
Increased Mucosal Thrombin is Associated with Crohn's Disease and Causes Inflammatory Damage through Protease-activated Receptors Activation.
Motta JP, Palese S, Giorgio C, Chapman K, Denadai-Souza A, Rousset P, Sagnat D, Guiraud L, Edir A, Seguy C, Alric L, Bonnet D, Bournet B, Buscail L, Gilletta C, Buret AG, Wallace JL, Hollenberg MD, Oswald E, Barocelli E, Le Grand S, Le Grand B, Deraison C, Vergnolle N.J Crohns Colitis. 2021 May 4;15(5):787-799. doi: 10.1093/ecco-jcc/jjaa229.PMID: 33201214 Free PMC article.
5. PMID: 31492202
Sexual dimorphism in PAR2-dependent regulation of primitive colonic cells.
Noguerol J, Roustan PJ, N'Taye M, Delcombel L, Rolland C, Guiraud L, Sagnat D, Edir A, Bonnart C, Denadai-Souza A, Deraison C, Vergnolle N, Racaud-Sultan C.Biol Sex Differ. 2019 Sep 6;10(1):47. doi: 10.1186/s13293-019-0262-6.PMID: 31492202 Free PMC article.
6. PMID: 31324782
Active thrombin produced by the intestinal epithelium controls mucosal biofilms.
Motta JP, Denadai-Souza A, Sagnat D, Guiraud L, Edir A, Bonnart C, Sebbag M, Rousset P, Lapeyre A, Seguy C, Mathurine-Thomas N, Galipeau HJ, Bonnet D, Alric L, Buret AG, Wallace JL, Dufour A, Verdu EF, Hollenberg MD, Oswald E, Serino M, Deraison C, Vergnolle N.Nat Commun. 2019 Jul 19;10(1):3224. doi: 10.1038/s41467-019-11140-w.PMID: 31324782 Free PMC article.
Daphnanes diterpenes from the latex of Hura crepitans L. and their PKCζ-dependent anti-proliferative activity on colorectal cancer cells.
Crossay E, Jullian V, Trinel M, Sagnat D, Hamel D, Groppi E, Rolland C, Stigliani JL, Mejia K, Cabanillas BJ, Alric L, Buscail E, El Kalamouni C, Mavingui P, Deraison C, Racaud-Sultan C, Fabre N.Bioorg Med Chem. 2023 Jul 15;90:117366. doi: 10.1016/j.bmc.2023.117366. Epub 2023 Jun 7.PMID: 37329676
2. PMID: 36283083
Prenatal stress induces changes in PAR2- and M3-dependent regulation of colon primitive cells.
Berger M, Guiraud L, Dumas A, Sagnat D, Payros G, Rolland C, Vergnolle N, Deraison C, Cenac N, Racaud-Sultan C.Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol. 2022 Dec 1;323(6):G609-G626. doi: 10.1152/ajpgi.00061.2022. Epub 2022 Oct 25.PMID: 36283083 Free PMC article.
3. PMID: 33674762
Epithelial production of elastase is increased in inflammatory bowel disease and causes mucosal inflammation.
Motta JP, Rolland C, Edir A, Florence AC, Sagnat D, Bonnart C, Rousset P, Guiraud L, Quaranta-Nicaise M, Mas E, Bonnet D, Verdu EF, McKay DM, Buscail E, Alric L, Vergnolle N, Deraison C.Mucosal Immunol. 2021 May;14(3):667-678. doi: 10.1038/s41385-021-00375-w. Epub 2021 Mar 5.PMID: 33674762 Free PMC article.
4. PMID: 33201214
Increased Mucosal Thrombin is Associated with Crohn's Disease and Causes Inflammatory Damage through Protease-activated Receptors Activation.
Motta JP, Palese S, Giorgio C, Chapman K, Denadai-Souza A, Rousset P, Sagnat D, Guiraud L, Edir A, Seguy C, Alric L, Bonnet D, Bournet B, Buscail L, Gilletta C, Buret AG, Wallace JL, Hollenberg MD, Oswald E, Barocelli E, Le Grand S, Le Grand B, Deraison C, Vergnolle N.J Crohns Colitis. 2021 May 4;15(5):787-799. doi: 10.1093/ecco-jcc/jjaa229.PMID: 33201214 Free PMC article.
5. PMID: 31492202
Sexual dimorphism in PAR2-dependent regulation of primitive colonic cells.
Noguerol J, Roustan PJ, N'Taye M, Delcombel L, Rolland C, Guiraud L, Sagnat D, Edir A, Bonnart C, Denadai-Souza A, Deraison C, Vergnolle N, Racaud-Sultan C.Biol Sex Differ. 2019 Sep 6;10(1):47. doi: 10.1186/s13293-019-0262-6.PMID: 31492202 Free PMC article.
6. PMID: 31324782
Active thrombin produced by the intestinal epithelium controls mucosal biofilms.
Motta JP, Denadai-Souza A, Sagnat D, Guiraud L, Edir A, Bonnart C, Sebbag M, Rousset P, Lapeyre A, Seguy C, Mathurine-Thomas N, Galipeau HJ, Bonnet D, Alric L, Buret AG, Wallace JL, Dufour A, Verdu EF, Hollenberg MD, Oswald E, Serino M, Deraison C, Vergnolle N.Nat Commun. 2019 Jul 19;10(1):3224. doi: 10.1038/s41467-019-11140-w.PMID: 31324782 Free PMC article.
